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BalBeads Streptavidin采用蛋白偶联技术将链霉亲和素共价连接于固相载体表面，可高效结合生物素化抗体、核酸、蛋白等配体分子。本制品采用超顺磁性微球，粒径均一、形貌规整，有利于方便、快捷地捕获目标分子以及实现磁性分离。本制品可配套自动化设备进行高通量操作。

• 免疫检测、分离蛋白、细胞分选等
  BalBeads Streptavidin可特异性地结合生物素化抗体或抗原，作为免疫检测、ELISA等固相反应载体，或用于分选细胞等。
  
• 分离核酸、制备核酸探针等
  BalBeads Streptavidin可特异性地结合生物素化的核酸探针，广泛应用于DNA、RNA的杂交实验。
  
• DNA-蛋白质相互作用研究
  BalBeads Streptavidin可特异性地结合生物素化的靶点DNA或RNA片段，可用于蛋白质与核酸相互作用研究。

• 应避免对磁珠进行冷冻等操作。
  
• 为减少磁珠损失，每次磁性分离的时间应不少于1min。
  
• 从磁珠保存管中移取磁珠前应充分震荡重悬均匀。操作过程中应避免产生气泡。
  
• 建议使用质量好的移液器吸头和反应管，避免因粘附磁珠及溶液而造成损失。
  
• 生物素化分子的大小会影响磁珠的载量。用户需要根据实验确定磁珠对特定生物素化分子的载量。
  
• 生物素化分子的加入量应为磁珠载量的1～2倍，以使磁珠饱和。
  
• 如需生物素与SA磁珠分离，可采用：
  方法一：0.1% SDS，煮沸5min；
  方法二：pH=8.2，含95%甲酰胺的10mM EDTA中，65℃ 5min或90℃ 2min。脱落率95%。
  
• 本制品仅供研究使用。

• 使用前准备
  
  • 缓冲液：以下为常用的缓冲液成分，用户可根据需要调整缓冲液的盐浓度及pH。
    
  • Buffer I（适用于结合生物素化核酸）：10mM Tris-HCl（pH7.5），1mM EDTA，1M NaCl，0.01%～0.1% Tween-20。
    
  • Buffer II（适用于结合生物素化抗体/蛋白）：PBS，pH7.4，含0.05% Tween-20，可根据需要添加0.01%～0.1% BSA。
    
  • 化学发光Washing buffer：用户根据需求配制洗液，使用时平衡至室温。
    
  • 磁性分离器。
    
  • 漩涡振荡器
    
  • 旋转混合仪
    
  • 移液器及吸头
    
  • 合适的离心管
• 结合生物素化核酸
  
  • 将磁珠瓶置于漩涡振荡器上20 s，振荡重悬磁珠。用移液器移取100μL磁珠到新的离心管中。将离心管置于磁性分离器上，静置1min（此操作后续简称为磁性分离），用移液器吸去上清液，从磁性分离器上取下离心管。
    备注：用户可根据生物素化分子的多少，参考产品信息表中磁珠的载量，计算需要取用的磁珠量。建议生物素化分子的加入量为磁珠载量的1～2倍，使磁珠饱和。
    
  • 加入1mL Buffer I到离心管中，盖上离心管盖，充分振荡重悬磁珠。磁性分离，移去上清液。
    备注：当步骤B.1取用磁珠体积大于1mL时，加入与磁珠体积相同的Buffer I。
    
  • 重复“步骤B.2”一次。
    
  • 加入500μL的用Buffer I稀释的生物素化核酸（使磁珠浓度为2mg/mL），充分振荡重悬磁珠。将离心管置于旋转混合仪上，室温旋转混合30min。
    
  • 磁性分离，将上清液转移至新的离心管。
    
  • 按“步骤B.2”的方法洗涤磁珠三次。
    
  • 根据后续实验的要求，加入合适的低盐缓冲液，重悬磁珠。至此结合生物素化核酸步骤完成。磁珠可用于后续操作。
    
  • 用户可以通过测定反应前后核酸的浓度，计算结合到磁珠上的核酸量﹝（反应前浓度-反应后浓度）×反应溶液体积﹞。
• 结合生物素化抗体/蛋白操作流程
  
  • 将磁珠瓶置于漩涡振荡器上20 s，振荡重悬磁珠。用移液器移取100μL磁珠到新的离心管中。磁性分离，用移液器吸去上清液，从磁性分离器上取下离心管。
    备注：用户可根据生物素化分子的多少，参考产品信息表中磁珠的载量，计算需要取用的磁珠量。建议生物素化分子的加入量为磁珠载量的1～2倍，使磁珠饱和。
    
  • 加入1mL Buffer II到离心管中，盖上离心管盖，充分振荡重悬磁珠。磁性分离，移去上清液。
    备注：当步骤C.1取用磁珠体积大于1mL时，加入与磁珠体积相同的Buffer II。
    
  • 重复“步骤C.2”两次，共洗涤三次。
    
  • 加入1mL用Buffer II稀释的生物素化抗体/蛋白（使磁珠浓度为1mg/mL），充分振荡重悬磁2.将离心管置于旋转混合仪上，室温旋转混合60min。
    
  • 磁性分离，将上清液转移至新的离心管。
    
  • 按“步骤C.2”的方法洗涤磁珠五次。
    
  • 根据后续实验的要求，加入Buffer II或其他合适的缓冲液，重悬磁珠。至此结合生物素化抗体/蛋白步骤完成。磁珠可用于后续操作。
• 磁微粒化学发光免疫诊断操作流程
  
  • 调整磁珠至合适浓度（建议0.8mg/mL），将磁珠置于漩涡振荡器上20 s，振荡重悬磁珠。用移液器移取50μL磁珠至96孔板中，磁性分离，用移液器吸去上清液，从磁性分离器上取下96孔板。
    
  • 每孔加入100μL生物素化捕获抗体，充分震荡重悬磁珠，37℃恒温箱中孵育15min后，磁性分离，用移液器吸去上清液，从磁性分离器上取下96孔板。
    
  • 每孔加入200μL的Washing buffer，充分震荡重悬磁珠，磁性分离，用移液器吸去上清液，从磁性分离器上取下96孔板，该步骤再重复2次，共洗涤3次。
    
  • 每孔加入50μL待测物标准品或待测样本，充分震荡重悬磁珠，37℃恒温箱中孵育15min后，磁性分离，用移液器吸去上清液，从磁性分离器上取下96孔板。
    
  • 每孔加入200μL的Washing buffer，充分震荡重悬磁珠，磁性分离，用移液器吸去上清液，从磁性分离器上取下96孔板，该步骤再重复2次，共洗涤3次。
    
  • 每孔加入100μL酶标记抗体，充分震荡重悬磁珠，37℃恒温箱中孵育15min后，磁性分离，用移液器吸去上清液，从磁性分离器上取下96孔板。
    
  • 每孔加入200μL的Washing buffer，充分震荡重悬磁珠，磁性分离，用移液器吸去上清液，从磁性分离器上取下96孔板，该步骤再重复2次，共洗涤3次。
    
  • 每孔加入150μL的底物液，充分震荡重悬磁珠，避光孵育5min。
    
  • 将96孔板放入化学发光仪读数，并进行相应数据处理。